DOI:
10.37988/1811-153X_2026_1_6Инактивация Staphylococcus aureus, Escherichia coli и Candida albicans в среде суб- и сверхкритического диоксида углерода: анализ поверхности отклика
Загрузки
Аннотация
Инфекционный контроль в стоматологии требует эффективных методов обработки инструментария. Традиционные методы (автоклавирование, химическая дезинфекция) имеют ограничения: коррозия металлов, длительность экспозиции, токсичность. Сверхкритический диоксид углерода (scCO2) рассматривается как альтернатива, однако систематические данные о сравнительной чувствительности различных патогенов к газодинамической обработке отсутствуют. Цель исследования — оценить факторно-зависимую и сравнительную эффективность газодинамической инактивации S. aureus, E. coli и C. albicans в среде суб- и сверхкритического диоксида углерода.Материалы и методы. Использовали коллекционные штаммы S. aureus, E. coli, C. albicans. Применяли центральное композиционное планирование с тремя факторами: температура 25—50°C, давление 10—100 атм, время 10—60 минут. Экспериментальная матрица включала 20 точек. Эффективность оценивали по показателю логарифмического снижения числа жизнеспособных микроорганизмов (ЛСМ). Регрессионные модели строили с использованием анализа поверхности отклика и пошаговым отбором факторов.
Результаты. Газодинамическая обработка обеспечила статистически значимую инактивацию всех микроорганизмов (p<0,001). Медианные значения ЛСМ: E. coli — 2,30 log10, C. albicans — 1,57 log10, S. aureus — 1,25 log10. Давление оказалось единственным значимым предиктором: для S. aureus выявлена нелинейная зависимость с квадратичным эффектом (p = 0,029), для E. coli — линейная тенденция (p = 0,092), для C. albicans зависимость отсутствовала. Температура и время экспозиции влияния не оказали.
Заключение. Выявлены существенные различия в чувствительности микроорганизмов к газодинамической обработке: грамотрицательные бактерии наиболее восприимчивы, давление является ключевым технологическим параметром. Метод обладает потенциалом для применения в стоматологии, однако требует валидации в условиях, приближенных к клинической практике.
Ключевые слова:
диоксид углерода, стоматологические инструменты, дезинфекция, коррозия, жизнеспособность микроорганизмовДля цитирования
[1]
Керасов С.Н., Арутюнов С.Д., Галстян М.С., Колесников П.Ю., Киракосян Л.Г., Харах Я.Н., Караков К.Г., Грачев Д.И. Инактивация Staphylococcus aureus, Escherichia coli и Candida albicans в среде суб- и сверхкритического диоксида углерода: анализ поверхности отклика. — Клиническая стоматология. — 2026; 29 (1): 6—13. DOI: 10.37988/1811-153X_2026_1_6
Список литературы
- Volgenant C.M.C., de Soet J.J. Cross-transmission in the dental office: Does this make you ill? — Curr Oral Health Rep. — 2018; 5 (4): 221—228. PMID: 30524929
- Volgenant C.M.C., Persoon I.F., de Ruijter R.A.G., de Soet J.J.H. Infection control in dental health care during and after the SARS-CoV-2 outbreak. — Oral Dis. — 2021; 27 (Suppl 3): 674—683. PMID: 32391651
- Smith G., Smith A. Microbial contamination of used dental handpieces. — Am J Infect Control. — 2014; 42 (9): 1019—21. PMID: 25179340
- Baudet A., Guillaso M., Grimmer L., Mediqai Study Group, Regad M., Florentin A. Microbiological contamination of the office environment in dental and medical practice. — Antibiotics (Basel). — 2021; 10 (11): 1375. PMID: 34827313
- Porter L., Sultan O., Mitchell B.G., Jenney A., Kiernan M., Brewster D.J., Russo P.L. How long do nosocomial pathogens persist on inanimate surfaces? A scoping review. — J Hosp Infect. — 2024; 147: 25—31. PMID: 38447803
- Gonçalves E., Carvalhal R., Mesquita R., Azevedo J., Coelho M.J., Magalhães R., Ferraz M.P., Manso M.C., Gavinha S., Pina C., Lopes Cardoso I. Detection of Staphylococcus aureus (MRSA/MSSA) in surfaces of dental medicine equipment. — Saudi J Biol Sci. — 2020; 27 (4): 1003—1008. PMID: 32256160
- Navidi M., Mirkeshavarz M., Haghi F. Assessment of Candida species contamination on dental unit surfaces: Prevalence, risk factors, and infection control strategies. — Journal of Inflammatory Diseases. — 2025; 29 (2): e161445. DOI: 10.69107/jid-161445
- Dioguardi M., Sovereto D., Illuzzi G., Laneve E., Raddato B., Arena C., Alberto Caponio V.C., Caloro G.A., Zhurakivska K., Troiano G., Lo Muzio L. Management of instrument sterilization workflow in endodontics: A systematic review and meta-analysis. — Int J Dent. — 2020; 2020: 5824369. PMID: 32148504
- Дунаев С.А. и соавт. Негативное влияние процессов стерилизации на режущую способность эндодонтического ротационного инструмента (обзорная статья). — Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. — 2023; 1: 7—11. eLIBRARY ID: 50389862
- Акавов А.Н., Расулов И.М., Подпорин М.С., Дешев А.В., Ипполитов Е.В., Царев В.Н., Колесников П.Ю. Антимикробная активность дезинфектантов, применяемых в ортопедической стоматологии в зависимости от степени разведения (экспериментальное исследование in vitro). — Пародонтология. — 2024; 3: 331—340. eLIBRARY ID: 68624653
- Salimon A.I., Statnik E.S., Kan Yu., Yanushevich O.O., Tsarev V.N., Podporin M.S., Arutyunov S.D., Skripnichenko P.Yu., Galstyan M.S., Korsunsky A.M. Comparative study of biomaterial surface modification due to subcritical CO2 and autoclave disinfection treatments. — The Journal of Supercritical Fluids. — 2022; 191: 105789. DOI: 10.1016/j.supflu.2022.105789
- Гветадзе Р.Ш., Галстян М.С., Харах Я.Н., Колесников П.Ю., Киракосян Л.Г., Подпорин М.С., Царев В.Н., Арутюнов С.Д. Оптимизация и валидация режимов инактивации спор Bacillus subtilis в среде сверхкритического CO2: чистый газ, перекись водорода, надуксусная кислота. — Медицина экстремальных ситуаций. — 2025; Online first. DOI: 10.47183/mes.2025-359
- Ribeiro N., Soares G.C., Santos-Rosales V., Concheiro A., Alvarez-Lorenzo C., García-González C.A., Oliveira A.L. A new era for sterilization based on supercritical CO2 technology. — J Biomed Mater Res B Appl Biomater. — 2020; 108 (2): 399—428. PMID: 31132221
- Bernhardt A., Wehrl M., Paul B., Hochmuth T., Schumacher M., Schütz K., Gelinsky M. Improved sterilization of sensitive biomaterials with supercritical carbon dioxide at low temperature. — PLoS One. — 2015; 10 (6): e0129205. PMID: 26067982
- Hashimi A., Tocheva E.I. Cell envelope diversity and evolution across the bacterial tree of life. — Nat Microbiol. — 2024; 9 (10): 2475—2487. PMID: 39294462
- Sun J., Rutherford S.T., Silhavy T.J., Huang K.C. Physical properties of the bacterial outer membrane. — Nat Rev Microbiol. — 2022; 20 (4): 236—248. PMID: 34732874
- Wang M., Buist G., van Dijl J.M. Staphylococcus aureus cell wall maintenance — the multifaceted roles of peptidoglycan hydrolases in bacterial growth, fitness, and virulence. — FEMS Microbiol Rev. — 2022; 46 (5): fuac025. PMID: 35675307
- Gow N.A.R., Latge J.P., Munro C.A. The fungal cell wall: Structure, biosynthesis, and function. — Microbiol Spectr. — 2017; 5 (3): 1—25. PMID: 28513415
- Rotabakk B.T., Rode T.M. Combining high-pressure processing and supercritical carbon dioxide for inactivation of Listeria innocua. — Foods. — 2023; 12 (19): 3563. PMID: 37835216
- Mai-Prochnow A., Clauson M., Hong J., Murphy A.B. Gram positive and Gram negative bacteria differ in their sensitivity to cold plasma. — Sci Rep. — 2016; 6: 38610. PMID: 27934958
- Silva J.M., Rigo A.A., Dalmolin I.A., Debien I., Cansian R.L., Oliveira J.V., Mazutti M.A. Effect of pressure, depressurization rate and pressure cycling on the inactivation of Escherichia coli by supercritical carbon dioxide. — Food Control. — 2013; 29 (1): 76—81. DOI: 10.1016/j.foodcont.2012.05.068.
- Gomez-Gomez A., Brito-de la Fuente E., Gallegos C., Garcia-Perez J.V., Quiles A., Benedito J. Microbial inactivation by means of ultrasonic assisted supercritical CO2. Effect on cell ultrastructure. — The Journal of Supercritical Fluids. — 2022; 179: 105407. DOI: 10.1016/j.supflu.2021.105407
- Ferrentino G., Calliari N., Bertucco A., Spilimbergo S. Validation of a mathematical model for predicting high pressure carbon dioxide inactivation kinetics of Escherichia coli spiked on fresh cut carrot. — The Journal of Supercritical Fluids. — 2014; 85: 17—23. DOI: 10.1016/j.supflu.2013.10.015
- Budisa N., Schulze-Makuch D. Supercritical carbon dioxide and its potential as a life-sustaining solvent in a planetary environment. — Life (Basel). — 2014; 4 (3): 331—40. PMID: 25370376
- Zambon A., Bourdoux S., Pantano M.F., Pugno N.M., Boldrin F., Hofland G., Rajkovic A., Devlieghere F., Spilimbergo S. Supercritical CO2 for the drying and microbial inactivation of apple’s slices. — Drying Technology. — 2021; 39 (2): 259—267. DOI: 10.1080/07373937.2019.1676774
- Yu T., Niu L., Iwahashi H. High-pressure carbon dioxide used for pasteurization in food industry. — Food Eng Rev. — 2020; 12 (3): 364—380. PMID: 40476998
- Kustyawati M.E., Pratama F., Saputra D., Wijaya A. Viability of molds and bacteria in tempeh processed with supercritical carbon dioxides during storage. — Int J Food Sci. — 2018; 2018: 8591015. PMID: 30402459
Загрузки
Поступила
12.11.2025
Принята
22.02.2026
Опубликовано
31.03.2026






