Цитологические особенности лейкоцитов периферической крови пациентов с флегмоной лица

Авторы

  • И.А. Боев 1, врач-стоматолог клинической стоматологической больницы, соискатель кафедры хирургической стоматологии и челюстно-лицевой хирургии
    ORCID ID: 0000-0002-9682-7680, Author ID: 944856
  • 1 ПГМУ им. акад. Е.А. Вагнера, 614000, Пермь, Россия

DOI:

10.37988/1811-153X_2022_1_54

Аннотация

Лейкоциты, участвующие в развитии воспалительного процесса при флегмоне лица, испытывают воздействие со стороны микрофлоры и ее метаболитов, а также со стороны разрушающихся тканей пациента. Относительно мало внимания уделяется цитологическим особенностям лейкоцитов периферической крови и экссудата при флегмоне лица. Цель исследования — изучение некоторых цитологических особенностей нейтрофильных лейкоцитов и моноцитов периферической крови и экссудата у пациентов с флегмоной лица.
Материалы и методы.
Содержание отдельных типов лейкоцитов и их цитологические особенности оценивали на микропрепаратах, полученных из образцов периферической крови от 18 пациентов с диагнозом «флегмона лица» и от 29 практически здоровых доноров. От пациентов получали пробы экссудата на этапе хирургического лечения. Препараты фиксировали раствором Май—Грюнвальда и окрашивали по методу Романовского—Гимза.
Результаты.
Показано, что при флегмоне лица увеличивается число лейкоцитов со сдвигом формулы влево. При этом увеличивается сегментация ядра нейтрофилов крови, что может быть необходимо для облегчения их миграции в очаг воспаления. Для моноцитов крови характерна вакуолизация цитоплазмы. Клеточный состав экссудата при флегмоне лица представлен преимущественно нейтрофилами (74,6±6,6%) и моноцитами. Вакуолизация моноцитов экссудата существенно более выражена, чем у таковых в крови. Так, число моноцитов с вакуолями было больше в 3 раза, а с включениями — в 13 раз, чем у этих же пациентов в крови. Выявленные цитологические изменения указывают на то, что в патогенезе флегмоны лица, вероятно, действуют два фактора: увеличение микробной нагрузки и продукты распада тканей.
Заключение.
Таким образом, выявленные цитологические изменения лейкоцитов при флегмоне лица указывают с одной стороны на их активацию, а с другой — на большую выраженность деструкции клеток.

Ключевые слова:

лейкоциты, флегмона лица, нейтрофилы, моноциты, цитологические особенности

Для цитирования

[1]
Боев И.А. Цитологические особенности лейкоцитов периферической крови пациентов с флегмоной лица. — Клиническая стоматология. — 2022; 25 (1): 54—57. DOI: 10.37988/1811-153X_2022_1_54

Список литературы

  1. Боев И.А., Штраубе Г.И., Антаков Г.И., Годовалов А.П. Некоторые эпидемиологические аспекты заболеваемости флегмонами лица. — Институт стоматологии. — 2017; 4 (77): 24—25. eLIBRARY ID: 32302004
  2. Боев И.А., Годовалов А.П., Штраубе Г.И., Антаков Г.И. Особенности заболеваемости флегмоной челюстно-лицевой области с оценкой эффективности детоксикационной терапии. — Пермский медицинский журнал. — 2019; 2: 29—35. eLIBRARY ID: 37629687
  3. Hajdamowicz N.H., Hull R.C., Foster S.J., Condliffe A.M. The impact of hypoxia on the host-pathogen interaction between neutrophils and Staphylococcus aureus. — Int J Mol Sci. — 2019; 20 (22): E5561. PMID: 31703398
  4. Rath E., Skrede S., Mylvaganam H., Bruun T. Aetiology and clinical features of facial cellulitis: a prospective study. — Infect Dis (Lond). — 2018; 50 (1): 27—34. PMID: 28768452
  5. Italiani P., Boraschi D. From monocytes to M1/M2 macrophages: Phenotypical vs. functional differentiation. — Front Immunol. — 2014; 5: 514. PMID: 25368618
  6. de Jong N.W.M., van Kessel K.P.M., van Strijp J.A.G. Immune evasion by Staphylococcus aureus. — Microbiol Spectr. — 2019; 7 (2). PMID: 30927347
  7. Lewis M.L., Surewaard B.G.J. Neutrophil evasion strategies by Streptococcus pneumoniae and Staphylococcus aureus. — Cell Tissue Res. — 2018; 371 (3): 489—503. PMID: 29204747
  8. Боев И.А., Штраубе Г.И., Антаков Г.И., Годовалов А.П. Эндогенная интоксикация у пациентов с флегмонами лица. — Клиническая стоматология. — 2018; 1 (85): 54—57. eLIBRARY ID: 32759413
  9. Bortolotti P., Faure E., Kipnis E. Inflammasomes in tissue damages and immune disorders after trauma. — Front Immunol. — 2018; 9: 1900. PMID: 30166988
  10. Афанасьева А.Н., Одинцова И.Н., Удут В.В. Синдромы эндогенной интоксикации и системного воспалительного ответа: общность и различия. — Анестезиология и реаниматология. — 2007; 4: 67—71. eLIBRARY ID: 21292709
  11. Kelly M., Hwang J.M., Kubes P. Modulating leukocyte recruitment in inflammation. — J Allergy Clin Immunol. — 2007; 120 (1): 3—10. PMID: 17559914
  12. Kokulu K., Günaydın Y.K., Akıllı N.B., Köylü R., Sert E.T., Köylü Ö., Cander B. Relationship between the neutrophil-to-lymphocyte ratio in acute pancreatitis and the severity and systemic complications of the disease. — Turk J Gastroenterol. — 2018; 29 (6): 684—691. PMID: 30381275
  13. Gulati G., Song J., Florea A.D., Gong J. Purpose and criteria for blood smear scan, blood smear examination, and blood smear review. — Ann Lab Med. — 2013; 33 (1): 1—7. PMID: 23301216
  14. Chabot-Richards D.S., George T.I. White blood cell counts: reference methodology. — Clin Lab Med. — 2015; 35 (1): 11—24. PMID: 25676369
  15. Pierre R.V. Peripheral blood film review. The demise of the eyecount leukocyte differential. — Clin Lab Med. — 2002; 22 (1): 279—97. PMID: 11933579
  16. Rocher A.E., Guerra F., Rofrano J., Angeleri A., Canessa O.E., Mendeluk G.R., Palaoro L.A. Sensitivity and specificity of cytodiagnosis of body fluids in a laboratory of urgencies. — Biotech Histochem. — 2011; 86 (5): 326—32. PMID: 20961211
  17. Honda T., Uehara T., Matsumoto G., Arai S., Sugano M. Neutrophil left shift and white blood cell count as markers of bacterial infection. — Clin Chim Acta. — 2016; 457: 46—53. PMID: 27034055
  18. Holub M., Klucková Z., Helcl M., Príhodov J., Rokyta R., Beran O. Lymphocyte subset numbers depend on the bacterial origin of sepsis. — Clin Microbiol Infect. — 2003; 9 (3): 202—11. PMID: 12667252
  19. Ansaldo E., Farley T.K., Belkaid Y. Control of Immunity by the Microbiota. — Annu Rev Immunol. — 2021; 39: 449—479. PMID: 33902310
  20. Бархина Т.Г., Гущин М.Ю., Алексеев Ю.В., Иванов А.В., Давыдов Е.В., Юдина Е.Б. Ультраструктурный анализ различных популяций клеток крови при аллергопатологии и воздействии светокислородного и фотодинамического эффектов. — Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. — 2018; 4: 218—224. eLIBRARY ID: 35552524
  21. Maiuolo J., Gliozzi M., Musolino V., Carresi C., Nucera S., Scicchitano M., Scarano F., Bosco F., Oppedisano F., Macrì R., Mollace V. Environmental and nutritional «stressors» and oligodendrocyte dysfunction: Role of mitochondrial and endoplasmatic reticulum impairment. — Biomedicines. — 2020; 8 (12): E553. PMID: 33265917
  22. Shubin A.V., Demidyuk I.V., Komissarov A.A., Rafieva L.M., Kostrov S.V. Cytoplasmic vacuolization in cell death and survival. — Oncotarget. — 2016; 7 (34): 55863—55889. PMID: 27331412
  23. Aki T., Nara A., Uemura K. Cytoplasmic vacuolization during exposure to drugs and other substances. — Cell Biol Toxicol. — 2012; 28 (3): 125—31. PMID: 22431173
  24. Кашутин С.Л., Вилова К.Г., Шагров Л.Л., Шерстенникова А.К., Неклюдова В.С., Теддер Е.И., Утюгова В.Н. Морфофункциональная характеристика моноцитов, мигрировавших в кожу. — Патологическая физиология и экспериментальная терапия. — 2018; 4: 130—135. eLIBRARY ID: 36575952
  25. Gossett K.A., MacWilliams P.S., Cleghorn B. Sequential morphological and quantitative changes in blood and bone marrow neutrophils in dogs with acute inflammation. — Can J Comp Med. — 1985; 49 (3): 291—7. PMID: 4041973
  26. Lee W.L., Harrison R.E., Grinstein S. Phagocytosis by neutrophils. — Microbes Infect. — 2003; 5 (14): 1299—306. PMID: 14613773

Загрузки

Поступила

26.11.2021

Принята

28.02.2022

Опубликовано

01.03.2022